Центральная научно-исследовательская лаборатория (ЦНИЛ) ИФМ была создана в 1962 году и в настоящее время оснащена современным оборудованием, в лаборатории работают высококвалифицированные специалисты в области молекулярно-клеточных и генетических технологий, биоинформатики, биоаналитики, электрофизиологии, клеточной и тканевой инженерии.
Биомаркеры ЦНС
Оценка экспрессии и активности специфических белков при различных патологиях, включая заболевания ЦНС, для выявления новых биомаркеров, терапевтических мишеней и их модуляторов.
Мозг-на-чипе
Разработка тест-систем «Мозг-на-чипе» и «ГЭБ-на-чипе» для научных и доклинических исследований.
Нейрорегенерация
Создание биосовместимых и биоразлагаемых материалов на основе децеллюляризированного матрикса мозга для тканезаместительной терапии.
Нейронные сети мозга
Изучение механизмов обработки информации в нейронных сетях мозга, включая исследование эпилепсии и действия противосудорожных препаратов на культуры нейронов человека.
Митохондриальные исследования
Исследование функций митохондрий и их роли в регуляции внутриклеточных сигнальных путей.
Стволовые клетки глаза
Создание высокотехнологичных лекарственных препаратов на основе лимбальных эпителиальных стволовых клеток для лечения лимбальной недостаточности.
Микробиота и мозг
Изучение взаимодействия метаболитов кишечной микробиоты и клеток мозга при воспалительных и нейродегенеративных заболеваниях.
Заведующий лаборатории - Неруш Анастасия Сергеевна, к.б.н.
На базе лаборатории проводятся исследования различных аспектов митохондриальной физиологии и регуляторной роли митохондрий в модуляции внутриклеточных сигнальных путей как на моделях животных с различными заболеваниями, так и клетках, полученных от пациентов.
Исследования сосредоточены на изучении: 1) механизмов развития митохондриальной дисфункции при различных патологиях, таких как нейродегенерация, боль, онкология, метаболический синдром и т.п.; 2) окислительного стресса в клетке и роли митохондрий в этом процессе; 3) митофагии как центрального механизма в поддержании клеточного гомеостаза, защищающего от накопления дефектных белков, депонированных в митохондриях; 4) адаптивных реакций метаболической пластичности и поиске новых регуляторных точек метаболизма в качестве терапевтических мишеней при нейродегенерации, онкологии, метаболических синдромах и т.п.
Помимо фундаментальных исследований в лаборатории реализуются направления прикладного характера: 1) разработка клеточных препаратов с учетом особенностей митохондриального метаболизма при терапии врожденных генетических аномалий; 2) разработка новых систем диагностики, основанных на выявлении причинных митохондриальных генов, которые участвуют в развитии патологий.
Лаборатория оснащена современным оборудованием, позволяющим исследовать биоэнергетику клетки с использованием платформы Oroboros (Oxygraph 2K, Австрия), которая обеспечивает запись потенциометрического напряжения одновременно с сигналом кислорода в обеих камерах. Дополнительный флуоресцентный модуль позволяет измерять потребление кислорода, производство перексида водорода, продукцию АТФ, Са2+, потенциал митохондриальной мембраны. Для характеристики биомолекулярных взаимодействий, в частности для оценки связывания лекарственных препаратов с мишенями в лаборатории используется система поверхностного плазмонного резонанса (Reichert 4 SPR, США). Изучение клеточных фенотипов и сортировка клеток осуществляется с использованием проточного цитометра BD FACSCanto II (США).
Контакты: Email: nerush_as@pimunn.net
Отдел молекулярно-клеточных технологий
р.
р.
Заведующий - Рябова Елена Владимировна, к.б.н., с.н.с.
Об отделе: Отдел основан в 2008 году и работает как с первичными клеточными культурами, так и стабильными клеточными линиями. Сотрудники отдела владеют методами моделирования патологических состояний на клеточных культурах (ишемия, эпилепсия, болезнь Альцгеймера) Конкурентным преимуществом отдела является практика культивирования клеток без добавлений антибиотиков и антимикотиков, что позволяет исследовать механизмы функционирования в максимально нативном, неискаженным виде. С 2019 года отдел расширил свою область деятельности, организовав лабораторию биоаналитики.
Функции отдела МКТ: Клеточная лаборатория: Основное практическое направление деятельности лаборатории – это разработка и моделирование патологических состояний на клеточных моделях и оценка действия фармакологических препаратов на функционирование клеток (Ca2+ имиджинг, цитотоксичность MTT-тест, Hoechst/PI, оценка миграции клеток, оценка изменения ЧБР (для мерцательного эпителия), электрофизиологическое исследование сетевой активности с применением MEA-матриц. Отдел занимается исследованием фундаментальных механизмов развития и старения, дифференцировки клеток, роли внеклеточного матрикса и различных белков в жизнедеятельности клеток на клеточных моделях in vitro (2D, 3D культуры, органоиды, опухолевые культуры, а также иПСК). Оснащение лаборатории позволяет работать с первичными и постоянными (в том числе и опухолевыми) клеточными культурами без антибиотиков. В случае работы с вирусными конструктами/культурами, требующих особых атмосферных условий в инкубаторе/культурами различного происхождения (человек, мышь, опухоль) предусмотрено наличие нескольких независимых клеточных боксов, оснащенных приточно-вытяжной вентиляцией с высокоэффективными HEPA фильтрами. Для хранения клеточных культур предусмотрены низкотемпературный морозильник и дублирующий резервный сосуд Дьюара. Инкубаторы в клеточных боксах снабжены страховочным источником бесперебойного тока, позволяющих снизить риски потери работоспособности лаборатории в условиях перебоя электроснабжения.
Лаборатория биоаналитики отдела МКТ ЦНИЛ занимается исследованиями метаболитов в биологических образцах и лекарственных препаратов в рамках научных или доклинических PK/PD/TK-исследований. Мы объединяем «сырые» данные биосистем с практическими идеями, адаптируя свою работу к потребностям науки, медицины или промышленности. Основной метод исследования — высокоэффективная жидкостная хроматография с ионизацией электрораспылением и тройным квадрупольным тандемным масс-спектрометрическим детектированием (HPLC–ESI–QqQ–MS/MS) — позволяет проводить целевой качественный и количественный анализ десятков и сотен малых молекул аналитов в микроколичествах сложных биологических матриц. Сотрудники лаборатории владеют навыками выбора и применения основных инструментальных методов анализа для решения конкретной задачи. Лаборатория многофункциональна и располагает ресурсами для пробоподготовки и осуществления необходимых физико-химических процессов для разработки аналитических методов, проведения потоковых анализов и практического обучения.
Контакты: Email: ryabova_ev@pimunn.net
Отдел клеточной инженерии
р.
р.
Заведующий - Пимашкин Алексей Сергеевич, к.ф.-м.н.
Деятельность лаборатории включает фундаментальные исследования, посвященные изучению распространения и передачи информации в нейрональных культурах в норме и патологии, и разработку микрофлюидных платформ для доклинических исследований воздействия фармакологических препаратов на нейрональные клетки, детектирования онкологических заболеваний и мониторинга эффективности противораковой терапии, создание прототипов нейроимплантов для восстановления функций мозга. Биочип для неинвазивного скрининга онкологических заболеваний В лаборатории разрабатываются технологии для создания тест-системы in vitro как медицинского изделия, применяемого в клинической практике для выявления и профилактики онкологических заболеваний. Детектирование в крови пациента циркулирующих опухолевых клеток (ЦОК) позволяет выявлять процесс метастазирования и осуществлять мониторинг эффективности проводимой противораковой терапии. Используемая в лаборатории клеточной инженерии технология основана на улавливании ЦОК из крови пациентов методом жидкой биопсии с использованием микрофлюидного чипа. Такой подход позволяет проводить неинвазивные исследования крови пациента на протяжении лечения и определить необходимость его изменения в случае увеличения количества ЦОК в крови. Система “мозг-на-чипе” С помощью современных клеточных и инженерных технологий (“Лаборатория-на-чипе”) разрабатываются микрофлюидные системы для выращивания нейронных сетей, формирующие мозгоподобную архитектуру функциональных связей. Внеклеточная регистрация биоэлектрических сигналов с помощью микроэлектродных матриц и оптической микроскопии позволяют исследовать генерацию, распространение и обработку информации в сети клеток. Система «Мозг-на-чипе» может быть использована для разработки методов персонализированного лечения нейродегенеративных заболеваний, создания прототипов нейроимплантов для реабилитации функций мозга и построения новых типов нейроинтерфейсов.
Отдел электронной микроскопии
р.
р.
Заведующий - Бугрова Марина Леонидовна, д.б.н., доцент
Отдел электронной микроскопии ЦНИЛ был основан в 1974 году. Основной задачей на тот момент было проведение исследований внутриклеточных структур в условиях патологии на клиническом материале и экспериментальных моделях для докторских и кандидатских диссертаций, НИР, выполняемых в Горьковском медицинском институте. В настоящее время сотрудники отдела электронной микроскопии имеют высокую квалификацию и опыт работ по изучению следующих объектов: субмикроскопическое исследование всех видов тканей животных и человека в условиях нормы и патологии с качественным и количественным методами оценки состояния ультраструктуры; анализ клеточных культур, микроорганизмов и грибов; качественное и количественное изучение структуры липосом; исследование размеров и агрегации наночастиц в биологических тканях, пленках и растворах.
Отдел оснащен обширной приборной базой, необходимой для методов трансмиссионной электронной микроскопии.
Кроме совместных НИР, сотрудники отдела проводят собственные исследования: «Система натрийуретических гормонов сердца в условиях сердечно-сосудистой патологии» (рук. д.б.н., доц. М.Л. Бугрова); «Функциональная морфология тканей» (рук. к.б.н. Т.И. Васягина).
Научная лаборатория тканевой инженерии
р.
р.
О лаборатории: Лаборатория сформирована в рамках реализации аванпроекта «Волга-А» от ФПИ. Целью лаборатории является выполнение практических разработок в области тканевой инженерии для последующей промышленной реализации исследуемых имплантов. Особенностью лаборатории является мультидисциплинарный подход в построении исследования: лаборатория в своей деятельности широко применяет биотехнологический подход для конструирования перспективных биоматериалов, экспериментально-хирургический подход для моделирования травм или осуществления имплантации испытываемых биоматериалов; гистологический и ультрамикроскопический методы анализа тканей после имплантации, а также электрофизиологический метод для оценки изменения электропроводимости и функциональной целостности возбудимых тканей и молекулярно-иммунологические методы для точечной оценки ключевых белков-маркеров, участвующих в восстановлении клеток и тканей.
Лаборатория корреляционной микроскопии
р.
р.
Лаборатория корреляционной микроскопии Лаборатория проводит широкий спектр научных работ с использованием передовых методов микроскопии и современных подходов к обработке полученных изображений, что позволяет получить качественный результат визуализации экспериментальных объектов исследования.
Направления исследований: Электронная микроскопия Электронная микроскопия позволяет оценивать либо топографию образцов (СЭМ), либо визуализировать внутриклеточные структуры с нанометровым разрешением (ТЭМ), определять внутриклеточные мишени воздействия различных веществ по изменению морфологии органелл. В отличие от флуоресцентной микроскопии позволяет получать изображение одновременно всех мембранных структур клетки.
Конфокальная микроскопия Возможны прижизненные исследования, а также анализ фиксированных образцов клеток и тканей. Подходит в качестве идентификации клеток интереса для последующей корреляционной микроскопии. На прямом микроскопе возможно исследовать не прозрачные образцы, на одной системе установлены как скоростная цветная камера с высоким разрешением для световой микроскопии, так и флуоресцентный и конфокальный модули.
Корреляционная микроскопия Корреляционная микроскопия дает возможности исследовать особенности отдельных клеток благодаря сочетанию двух видов микроскопии на одной и той же клетке/области.
Оборудование:
Ультратом Leica UC7
Высококачественный ультрамикротом для получения срезов при комнатной температуре.
Электонный микроскоп Morgagni 268, FEI
Ускоряющее напряжение 40 — 100 кВ. Разрешение по точкам 0,45 нм. Увеличение 25 — 200,000
Сканирующий электронный микроскоп Merlin, Zeiss
Микроскоп с полевым эмиссионным катодом, колонной электронной оптики GEMINI-II и безмаслянной вакуумной системой. Микроскоп оснащен четырехквадрантным детектором обратно-рассеянных электронов (AsB) и детектором обратно-рассеянных электронов с фильтрацией по энергиям (EsB). Пространственное разрешение (предельное) при ускоряющем напряжении 15 кВ: 40 нА — 0,8 нм; 100 нА — 0,8 нм; 300 нА — 1.0 н.
Конфокальный микроскоп Nikon AX Confocal Systems
Прямой микроскоп позволяет получать высококачественные изображения клеток и молекулярных процессов с непревзойденной скоростью до 420 кадров в секунду. Возможен спектральный анализ и комплектация гибридным детектором на GaAsP. Поле зрения 25 мм — самое большое в Мире. Расширенный набор инструментов на основе искусственного интеллекта (ИИ) для ускорения микроскопических исследований.
Флуоресцентный микроскоп Axio observer, Zeiss
Исследовательский инвертированной микроскоп с функцией автоматической регулировки и фокусировки, поддержкой одновременно нескольких методик контрастирования, а также с возможностью установки цифровой камеры, микроманипуляторов и антивибрационного столика. Специальная система флуоресцентного освещения позволяет визуализировать до 95% красителей.
Криотом Leica CM 1900
Криостат Leica CM1900 UV с дезинфекцией ультрафиолетом. Двухкомпрессорная система охлаждения; Независимая установка температуры в камере от 0 до -35 °C и на образце от -10 до -50 °C; Толщина срезов от 1 до 60 мкм; Программируемое циклическое размораживание (15 минут); Ретракция образца; Полочка быстрого замораживания позволяет охладить до -45°C 10 дисков с образцами; Ориентация образца.
Ультрамикротом. Используется в тех случаях, когда требуется подготовка тонкого сечения для операций электронной микроскопии.
GKM-2 76011-DR, RMC Products
Прибор для изготовления стеклянных ножей. Возможность изготовления ножей из стеклянных полос толщиной от 6 до 12 мм и с углом разлома от 35° до 55°
Leica EM KMR2
Предназначен для изготовления стеклянных ножей шириной 64 мм и углом 45о для приготовления ультратонких срезов.
Компьютеры высокой мощности
Применяются для максимально быстрой обработки результатов микроскопических исследований.
PowerTome XL RMC Products, США
Основные преимущества корреляционной микроскопии:
высокая точность;
разнообразие подходов;
глубокий анализ;
многоуровневое исследование.
Таким образом, корреляционная микроскопия представляет собой мощный инструмент для междисциплинарных исследований, позволяющий глубже проникнуть в тайны сложных структур и процессов.
Технический отдел
р.
р.
Технический отдел центральной научно-исследовательской лаборатории играет ключевую роль в обеспечении успешного функционирования исследовательской деятельности. Его основная задача — поддержка и обслуживание научного оборудования, а также создание условий для проведения экспериментов и исследований.
Основные функции технического отдела:
Обслуживание и ремонт оборудования;
Техническая поддержка всех приборов и устройств, используемых в лаборатории;
Проведение регулярного обслуживания и калибровки оборудования;
Устранение неисправностей и проведение ремонтных работ;
Закупки и снабжение:
Подбор и закупка необходимого оборудования, расходных материалов и реактивов;
Контроль сроков поставок и качества поступающих товаров;
Взаимодействие с поставщиками и подрядчиками.
Технический отдел является неотъемлемой частью лаборатории, обеспечивая надежность и эффективность проводимых исследований.
ПроМозг
Просто о сложном — не значит примитивно. Значит — честно и по существу.
Assessing axitinib-induced differential responses in tumor vascularization and oxygenation with combined optoacoustic angiography and diffuse optical spectroscopy. Orlova A., Akhmedzhanova K., Glyavina A., Kurnikov A., Khochenkov D., Khochenkova Yu., Korobov A., Volovetskiy A., Yudintsev A., Nerush A., Maslennikova A., Vodeneev V., Turchin I., Liu W., Razansky D., Subochev P. Neoplasia. 2026.
Efimova, A.A., Kim, M.S., Mitroshin, A.M. et al. Impact of Biotinylation Strategy on the Luminescent Properties and Quantum Yield of Carbon Dots. J Fluoresc (2026). https://doi.org/10.1007/s10895−026−4 906−1. Q2. IF 3.4.
Ryabova, E.V.; Ivanova, E.A.; Komissarov, A.E.; Bolobolova, E.U.; Dorogova, N.V.; Slepneva, E.E.; Latypova, E.M.; Ogneva, I.V.; Sarantseva, S.V. Swiss cheese Is Essential for Maintaining Spermatogenesis and the Proper Functioning of Biological Barriers in Drosophila. Int. J. Mol. Sci.2026, 27, 5486. https://doi.org/10.3390/ijms27125486. Q1. IF 5.6.
Vasyagina, T.; Nefedova, D.; Seliverstov, A.; Shchelchkova, N.; Bugrova, M.; Bavrina, A. Ultrastructural Signs of High Functional Activity of Neuromuscular Synapses in Aging Rats After Photobiomodulation. Cells 2026, 15, 710. doi.org/10.3390/cells15080710
Е. А. Иванова, Е. В. Рябова, Е. А. Зобнина, Саранцева С. В. Нарушение экспрессии гена swiss cheese Drosophila melanogaster приводит к разрушению межклеточных соединений мальпигиевых сосудов // Журнал эволюционной биохимии и физиологии. — 2026. — Т. 62, № 2. — С. 95−109. — DOI 10.7868/S3034552926020022.
2025
Bolshakova O. I., Golomidov I.M. Latypova E.M., Ryabova E.V., Sarantseva S.V. Role of Oxidative Stress in Human Neurodegenerative Pathologies: Lessons from the Drosophila Model // Current Topics in Medicinal Chemistry. 2025. doi.org/10.2174/115 680 266 356 916 255 071 404 032. Q2. IF 3.3.
Gladkov, A.A.; Zemlyanskov, M.S.; Pigareva, Y.I.; Kolpakov, V.N.; Kazantsev, V.B.; Mukhina, I.V.; Pimashkin, A.S. Microfluidic Chip for Studying the Mechanisms of Allogeneic Progenitor Neuronal Cells Integration into a Mature Neural Network In Vitro. Bull Exp Biol Med 2025, 178, 387−392, doi:10.1007/s10517−025−6 342-w.
Ivanova E. A., Ryabova E.V., Komissarov A.E., Slepneva E.E., Stulov A.A., Sarantseva S.V. Swiss Cheese Gene Is Important for Intestinal Barrier, Microbiome, and Lipid Metabolism Regulation in Drosophila Gut // International Journal of Molecular Sciences. 2025. № 22 (26). C. 11 085 https://doi.org/10.3390/ijms262211085. Q1. IF 4.9.
Kovaleva, T.; Gainullin, M.; Mukhina, I.; Pershin, V.; Matskova, L. Cofilin (s) and Mitochondria: Function Beyond Actin Dynamics. IJMS 2025, 26, 4094, doi:10.3390/ijms26094094.
Shirokova, O.M.; Kuzmina, D.M.; Zaborskaya, O.G.; Shchelchkova, N.A.; Kozliaeva, E.V.; Korotchenko, S.A.; Pershin, V.I.; Vasilchikov, P.I.; Mukhina, I.V. The Long-Term Effects of Chronic Unpredictable Mild Stress Experienced During Adolescence Could Vary Depending on Biological Sex. IJMS 2025, 26, 1251, doi:10.3390/ijms26031251.
Volovetsky, A.; Novikova, V.; Boloban, A.; Rzhevskiy, A.; Kapitannikova, A.; Ovchinnikova, E.; Klejmentjeva, T.; Grishin, V.; Pigareva, Y.; Zvyagin, A.; et al. Prognostic Value of the Number of Circulating Tumor Cells in Patients with Metastatic Non-Small Cell Lung Cancer. Micromachines 2025, 16, 470, doi:10.3390/mi16040470.
Голубкова Е. В., Якимова А. О., Ахромов К. В., Рябова Е. В., Грудкова Д. М., Барабанова Л. В., Саранцева С. В., Мамон Л. А. Рнк-Связывающий Белок Nxf1 необходим для развития нервной системы Drosophila melanogaster // Онтогенез. 2025. № 1 (56). C. 24−35. doi.org/10.31 857/S0475145025010034.
2024
Bolshakova O. I., Latypova E.M., Komissarov A.E., Slobodina A.D., Ryabova E.V., Varfolomeeva E.U., Agranovich O.E., Batkin S.F., Sarantseva S.V. Cellular and Molecular Effects of the Bruck Syndrome-Associated Mutation in the PLOD2 Gene // International Journal of Molecular Sciences. 2024. № 24 (25). C. 13 379. Q1. IF. 5.6. https://doi.org/10.3390/ijms252413379
Pigareva, Y.; Gladkov, A.; Kolpakov, V.; Kazantsev, V.B.; Mukhina, I.; Pimashkin, A. The Profile of Network Spontaneous Activity and Functional Organization Interplay in Hierarchically Connected Modular Neural Networks In Vitro. Micromachines 2024, 15, 732, doi:10.3390/mi15060732.
2023
Bolshakova O. I., Borisenkova A., Golomidov I.M., Komissarov A.E., Slobodina A.D., Ryabova E.V., Ryabokon I.S., Latypova E.M., Slepneva E.A., Sarantseva S.V. Fullerenols Prevent Neuron Death and Reduce Oxidative Stress in Drosophila Huntington’s Disease Model // Cells. 2023. № 1. P. 170. doi.org/10.3390/cells12010170. https://doi.org/10.3390/cells12010170. Q1. IF 7.66.
Khilal, N.R.; Suntsova, M.V.; Knyazev, D.I.; Guryanova, A.A.; Kovaleva, T.F.; Sorokin, M.I.; Buzdin, A.A.; Katkova, N.Y. Adaptation and Experimental Validation of Clinical RNA Sequencing Protocol Oncobox for MGI DNBSEQ-G50 Platform. Biochem. Moscow Suppl. Ser. B 2023, 17, 172−182, doi:10.1134/S1990750823600589.
Nuzhina, N.; Prodius, P.; Mukhina, I. Visual Verbal Information Processing under Conditions of Reading and Categorization in Schizotypy: An Event-Related Brain Potential Study. J. Integr. Neurosci. 2023, 22, 35, doi:10.31 083/j.jin2202035.
Pigareva, Y.; Gladkov, A.; Kolpakov, V.; Bukatin, A.; Li, S.; Kazantsev, V.B.; Mukhina, I.; Pimashkin, A. Microfluidic Bi-Layer Platform to Study Functional Interaction between Co-Cultured Neural Networks with Unidirectional Synaptic Connectivity. Micromachines 2023, 14, 835, doi:10.3390/mi14040835.
Potashnikova, D.M.; Sotnikova, T.N.; Shirokova, O.M.; Zayratyants, O.V.; Vasilieva, E.Yu.; Sheval, E.V. Cilia Impairment in Bronchial Epithelial Cells Detected in Autopsy Material of SARS-CoV-2-Infected Patient. Ultrastructural Pathology 2023, 47, 382−387, doi:10.1080/1 913 123.2023.2 222 167.
Shirokova, O.; Zaborskaya, O.; Pchelin, P.; Kozliaeva, E.; Pershin, V.; Mukhina, I. Genetic and Epigenetic Sexual Dimorphism of Brain Cells during Aging. Brain Sciences 2023, 13, 195, doi:10.3390/brainsci13020195.
Golomidov I. M., Latypova E. M., Ryabova E. V., Bolshakova O. I., Komissarov A. E., Sarantseva S. V. Reduction of the α-synuclein expression promotes slowing down early neuropathology development in the Drosophila model of Parkinson’s disease // Journal of Neurogenetics. 2022. P. 1−10. https://doi.org/10.1080/1 677 063.2022.2 064 462. Q3. IF 1.7.
Kudinov, V.A.; Artyushev, R.I.; Zurina, I.M.; Zorina, E.S.; Lapshin, R.D.; Snopova, L.B.; Mukhina, I.V.; Saburina, I.N. Inhaled Placental Mesenchymal Stromal Cell Secretome from Two- and Three-Dimensional Cell Cultures Promotes Survival and Regeneration in Acute Lung Injury Model in Mice. IJMS 2022, 23, 3417, doi:10.3390/ijms23073417.
Malyshev, I.V.; Reunov, D.G.; Chkhalo, N.I.; Toropov, M.N.; Pestov, A.E.; Polkovnikov, V.N.; Tsybin, N.N.; Lopatin, A.Ya.; Chernyshev, A.K.; Mikhailenko, M.S.; et al. High-Aperture EUV Microscope Using Multilayer Mirrors and a 3D Reconstruction Algorithm Based on z-Tomography. Opt. Express 2022, 30, 47 567, doi:10.1364/OE.475 032.
Melentev P., Sharapenkov E., Surina N., Ivanova E., Ryabova E., Sarantseva S. Drosophila Lysophospholipase Gene swiss cheese Is Required for Survival and Reproduction // Insects. 2022. № 1 (13). P. 14. https://doi.org/10.3390/insects13010014. Q1. IF 2.9.
Shirmanova, M.V.; Gavrina, A.I.; Kovaleva, T.F.; Dudenkova, V.V.; Zelenova, E.E.; Shcheslavskiy, V.I.; Mozherov, A.M.; Snopova, L.B.; Lukyanov, K.A.; Zagaynova, E.V. Insight into Redox Regulation of Apoptosis in Cancer Cells with Multiparametric Live-Cell Microscopy. Sci Rep 2022, 12, 4476, doi:10.1038/s41598−022−8 509−1.
Sokolov, R.A.; Mukhina, I.V. Spontaneous Ca2+ Events Are Linked to the Development of Neuronal Firing during Maturation in Mice Primary Hippocampal Culture Cells. Archives of Biochemistry and Biophysics 2022, 727, 109 330, doi:10.1016/j.abb.2022.109 330.
Zhukova, O.V.; Arkhipova, E.V.; Kovaleva, T.F.; Zykova, D.A.; Dubovskaya, N.A. Effect of Poly (Methacrylic Acid) on the Cytokine Level in an In Vivo Tumor Model. Molecules 2022, 27, 4572, doi:10.3390/molecules27144572.
2021
Kudinov, V.A.; Artyushev, R.I.; Zurina, I.M.; Lapshin, R.D.; Snopova, L.B.; Mukhina, I.V.; Grinakovskaya, O.S.; Saburina, I.N. Antimicrobial and Regenerative Effects of Placental Multipotent Mesenchymal Stromal Cell Secretome-Based Chitosan Gel on Infected Burns in Rats. Pharmaceuticals 2021, 14, 1263, doi:10.3390/ph14121263.
Melentev P., Ryabova E., Surina N., Zhmujdina D., Komissarov A., Ivanova E., Boltneva N., Makhaeva G., Sliusarenko M., Yatsenko A., Mohylyak I., Matiytsiv N., Shcherbata H., Sarantseva S. Loss of swiss cheese in Neurons Contributes to Neurodegeneration with Mitochondria Abnormalities, Reactive Oxygen Species Acceleration and Accumulation of Lipid Droplets in Drosophila Brain // International Journal of Molecular Sciences. 2021. № 15 (22). P. 8275. https://doi.org/10.3390/ijms22158275. Q1. IF 5.6.
Ryabova E., Melentev P., Komissarov A., Surina N., Ivanova E., Matiytsiv N., Shcherbata H., Sarantseva S. Morpho-Functional Consequences of Swiss Cheese Knockdown in Glia of Drosophila melanogaster // Cells. 2021. № 10 (3). https://doi.org/10.3390/cells10030529. Q2. IF 7.66.
Shirokova, O. M.; Mishchenko, T. A.; Usenko, A. V.; Mukhina, I. V.; Vedunova, M. V. Effect of Chronic Exogenous Stimulation of Neurotrophic Factor BDNF on Mitochondria-Endoplasmatic Reticulum Contacts in Immature Neurons. 2021, doi:10.24 412/2500−2295−2021−3-65−71.
The localization of the photosensitizer determines the dynamics of the secondary production of hydrogen peroxide in cell cytoplasm and mitochondria. Peskova N.N., Brilkina A.A., Gorokhova A.A., Shilyagina N.Yu., Kutova O.M., Nerush A.S., Orlova A.G., Klapshina L.G., Vladimir V.V., Balalaeva. I.V.J Photochem Photobiol B. 2021.
Мелентьев П.А., Рябова Е. В., Саранцева С. В. Частная история нейрогенетики: ген swiss cheese и его ортологи // Генетика. 2021. № 10 (57). С. 1103−1120. https://doi.org/10.31 857/S0016675821090071. Q3. IF 1.1.
2020
Effects of photobiomodulation in relation to HeLa Kyoto tumor cells exposed to ionizing radiation. Cherkasova E., Babak K., Belotelov A, Labutina J., Yusupov V., Vorobiev N., Nerush A., Maslennikova A. J Photochem Photobiol B. 2020.
Kovaleva, T.F.; Maksimova, N.S.; Pchelin, P.V.; Pershin, V.I.; Tkachenko, N.M.; Gainullin, M.R.; Mukhina, I.V. A New Cofilin-Dependent Mechanism for the Regulation of Brain Mitochondria Biogenesis and Degradation. Sovrem Tehnol Med 2020, 12, 6, doi:10.17 691/stm2020.12.1.01.
Maximova, N.S.; Pershin, V.I.; Tkachenko, N.M.; Gainullin, M.; Mukhina, I.V.; Kovaleva, T.F. Study of the Effect of a Proteasome Inhibitor on Actin Cytoskeleton Remodeling in the Nerve Cells by Fluorescence Imaging. In Proceedings of the Saratov Fall Meeting 2019: Optical and Nano-Technologies for Biology and Medicine; Tuchin, V.V., Genina, E.A., Eds.; SPIE: Saratov, Russian Federation, April 9 2020; p. 10.
Mikhaylov, A.; Pimashkin, A.; Pigareva, Y.; Gerasimova, S.; Gryaznov, E.; Shchanikov, S.; Zuev, A.; Talanov, M.; Lavrov, I.; Demin, V.; et al. Neurohybrid Memristive CMOS-Integrated Systems for Biosensors and Neuroprosthetics. Front. Neurosci. 2020, 14, 358, doi:10.3389/fnins.2020.358.
Solomatina, A. D. Slobodina, E. V. Ryabova, O. I. Bolshakova, P. S. Chelushkin, S. V. Sarantseva, S. P. Tunik. Blood-Brain Barrier Penetrating Luminescent Conjugates Based on Cyclometalated Platinum (II) Complexes// Bioconjugate Chemistry. 2020. № 11 (31). P. 2628−2637. https://dx.doi.org/10.1021/acs.bioconjchem.0c00542. Q1. IF 4.3.
Zhukova, O.V.; Zaitsev, S.D.; Ryabov, S.A.; Arkhipova, E.V.; Kovaleva, T.F.; Mukhina, I.V. Effect of (Co)Polymers Based on Methacrylic Acid on the State of Cells of the Immune System. Russ Chem Bull 2020, 69, 1579−1584, doi:10.1007/s11172−020−2938−9.
Zhuravleva, Z.D.; Mogutina, M.A.; Mukhina, I.V.; Druzin, M.Ya. Effects of Glycine Receptors of the Medial Preoptic Nucleus on Sexual Behavior of Male Wistar Rats. Bull Exp Biol Med 2020, 169, 299−301, doi:10.1007/s10517−020−4 873-y.
Е. В. Рябова, Е. М. Латыпова, Н. В. Сурина, А. Е. Комиссаров, С. В. Саранцева. Развитие, структура и функции глиальных клеток Drosophila melanogaster// Интегративная физиология. 2020. № 3 (1). C. 202−211.https://doi.org/10.33 910/2687−1270−2020−1-3−202−211. IF РИНЦ 0.36
2019
Hydrogen peroxide in the reactions of cancer cells to cisplatin. Nerush A.S., Shсhukina K.M., Balalaeva I.V., Orlova A.G. BBA — General Subjects. 2019.
Hydrogen peroxide level in tumor cells during cisplatin-induced apoptosis. Nerush A.S., Shсhukina K.M., Balalaeva I.V., Orlova A. G. Biochim Biophys Acta Gen Subj. 2019.
Kovaleva, T.F.; Maksimova, N.S.; Zhukov, I.Yu.; Pershin, V.I.; Mukhina, I.V.; Gainullin, M.R. Cofilin: Molecular and Cellular Functions and Its Role in the Functioning of the Nervous System. Neurochem. J. 2019, 13, 11−19, doi:10.1134/S1819712419010124.
Mishchenko, T.A.; Mitroshina, E.V.; Usenko, A.V.; Voronova, N.V.; Astrakhanova, T.A.; Shirokova, O.M.; Kastalskiy, I.A.; Vedunova, M.V. Features of Neural Network Formation and Their Functions in Primary Hippocampal Cultures in the Context of Chronic TrkB Receptor System Influence. Front. Physiol. 2019, 9, 1925, doi:10.3389/fphys.2018.1 925.
Shirokova, O.M.; Sokolov, R.A.; Korotchenko, S.A.; Pershin, V.I.; Ermin, K.V.; Glyavina, M.M.; Zhuchenko, M.A.; Andreeva, N.N.; Shchelchkova, N.A.; Mukhina, I.V. Neurotropic Effect of Carbamylated Darbepoietin on the Model of Primary Hippocampal Culture. Sovrem Tehnol Med 2019, 11, 87, doi:10.17 691/stm2019.11.4.10.
Towards Bimodal Optical Monitoring of Photodynamic Therapy with Targeted Nanoconstructs: A Phantom Study. Kurakina D., Kirillin M., Perekatova V., Plekhanov V., Orlova A., Sergeeva E., Khilov A., Nerush A., Subochev P., Mallidi S., Turchin I., Hasan T. Appl. Sci. 2019.
2018
Shirmanova, M.; Sergeeva, T.; Druzhkova, I.; Meleshina, A.; Lukina, M.; Dudenkova, V.; Shcheslavskiy, V.; Becker, W.; Belousov, V.; Mishina, N.; et al. 10 Metabolic Shifts in Cell Proliferation and Differentiation. In Multiphoton Microscopy and Fluorescence Lifetime Imaging; König, K., Ed.; De Gruyter, 2018; pp. 189−208 ISBN 978−3-11−42 998−5.
Zhukova, O.V.; Sergeeva, T.F.; Gavrina, A.I. Modified Poly (T-Butyl Methacrylate) as a Doxorubicin Carrier for Targeted Delivery. Pharm Chem J 2018, 52, 539−544, doi:10.1007/s11094−018−1856−8.
Изменение уровня АФК в клетках HeLa Kyoto на разных стадиях цисплатин-индуцированной клеточной гибели. Щукина К. М., Неруш А. С., Орлова А. Г. Актуальные вопросы биологической физики. 2018.
Протекторная роль N, N'-диметилтиомочевины и ее влияние на внутриклеточный уровень пероксида водорода при воздействии цисплатина на клетки HeLa Kyoto. Неруш А. С., Щукина К. М., Орлова А. Г. Современные технологии в медицине. 2018.
Научные проекты
Проекты ЦНИЛ
Изучение механизмов формирования эпилепсии в клеточной микрофлюидной модели нейро-глиомы (Глиома-на-чипе) № 26−15−550, 2026−2028 гг. (руководитель Пимашкин А.С.)
Разработка платформы in vitro для моделирования эпилептиформной активности и персонализированного скрининга противосудорожных препаратов с использованием биоинженерных нейронных сетей № 25−25−1 085, 2026−2027 гг. (руководитель Гладков А.А.)
Государственное задание «Разработка комбинированного биотехнологического лекарственного средства для лечения лимбальной недостаточности, в том числе при аниридии», Министерство здравоохранения Российской федерации, 2025−2028 гг. (руководитель Мухина И.В.)
Грант РНФ № 22−15−20 043 «Роль митохондриальных контактов с эндоплазматическим ретикулумом в половом диморфизме клеток мозга при старении in vitro и in vivo», 2022−2024 гг. (руководитель Широкова О.М.),
Приоритет-2030 «Развитие центра Агробиотехнологий (АБТ) ЦНИЛ ИФМ ПИМУ», 2022−2025 гг. (руководитель Максимова Н.С.)
Приоритет-2030 «Создание всероссийского центра корреляционной микроскопии», 2022−2025 гг. (руководитель Широкова О.М.)
Приоритет-2030 «Разработка способа скрининговой диагностики и выявления рецидива глиальных опухолей», 2022−2025 гг. (руководитель Мухина И.В.)
Государственное задание «Новые молекулярно-клеточные подходы к прогнозированию и коррекции нейросетевой патологии мозга и когнитивных функций, ассоциированных с нейровоспалением», Министерство здравоохранения Российской федерации, 2021−2023 гг. (руководитель Мухина И.В.)
Грант РНФ № 17−75−10 202 «Убиквитин-зависимые процессы в патогенезе болезни Альцгеймера и их коррекция как новое направление лекарственной терапии», 2017−2019 гг. (руководитель Ковалева Т.Ф.)
Грант РФФИ № 18−34−690, «Исследование роли посттрансляционных модификаций кофилина в регуляции митофагии», 2018−2020 гг. (руководитель Ковалева Т.Ф.),
Грант РФФИ № 18−44−520 016 «РНК-зависимая аденозиндезаминаза (ADAR2) как мишень регуляторного воздействия в терапии вызванной нарушением внеклеточного матрикса мозга эпилептиформной активности мозга», 2018−2020 гг. (руководитель Мухина И.В.).
Проекты при участии ЦНИЛ
Приоритет-2030 «Разработка тест-системы поиска мутаций в гене ТР53 для мониторинга онкобольных и поддержки принятия врачебных решений в ходе терапии», 2023−2025 гг. (руководитель Князев Д.И.)
Приоритет-2030 «Создание регионального центра онкологических исследований на базе ПИМУ», 2022−2025 гг. (руководитель Ковалева Т.Ф.)
Приоритет-2030 «Создание панели генетической диагностики, позволяющей прогнозировать развитие синдрома коронарной микрососудистой обструкции выполнения чрескожных коронарных вмешательств», 2022−2023 гг. (руководитель Починка И.Г.)
Государственное задание «Разработка инновационных способов лечения миофасциальных болей у пациентов пожилого возраста на основе изучения механизмов биологического действия низкоинтенсивного красного света», Министерство здравоохранения Российской федерации, 2021−2023 гг. (руководитель Баврина А.П.)
Оборудование
Автоматическая система капиллярного электрофореза (фрагментный анализатор) Qsep1 Plus